MC3T3-E1细胞系成骨分化无矿化结节是什么原因?
MC3T3-E1细胞系来源于C57BL/6小鼠颅顶骨,具有分化为成骨细胞的能力。在抗坏血酸(促进胶原合成和基质成熟)、β-甘油磷酸钠(提供矿化所需磷酸根)和地塞米松(诱导成骨标志物表达)的联合刺激下,细胞会经历增殖、基质成熟和矿化三个阶段。通过碱性磷酸酶(ALP)染色/定量检测早期分化,茜素红染色检测晚期矿化结节,并通过qRT-PCR检测成骨相关基因(如Runx2、OCN、BSP)的表达进行综合评价。
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01 MC3T3-E1细胞系与亚克隆选择

MC3T3-E1细胞系存在不同亚克隆,分化能力差异显著,选择正确的亚克隆是实验成功的关键。
推荐亚克隆:MC3T3-E1 Subclone 14 或 Subclone 4。这些亚克隆在抗坏血酸和无机磷酸盐存在下,表现出高水平的成骨分化能力,约10-14天可形成矿化良好的细胞外基质。
02 MC3T3-E1成骨诱导分化实验指南
实验材料
1. 细胞系:OriCell®MC3T3-E1 Subclone 14(货号M7-0201)(小技巧:推荐使用低传代次数,细胞分化潜能更佳)。
2. 生长培养基:OriCell®MC3T3-E1 Subclone 14 细胞系完全培养基(货号CMM7-0201,内含基础培养基+乌拉圭胎牛血清)。
3. 诱导分化培养基:OriCell®小鼠MC3T3-E1细胞成骨诱导分化试剂盒(货号MUXMT-90021,内含基础培养基+新西兰胎牛血清+成骨诱导添加物+茜素红染色液+明胶)(小技巧:胎牛血清使用需筛选适合成骨诱导的批次)。
4. 其他试剂:PBS、0.25%胰蛋白酶-EDTA、4%多聚甲醛、BCIP/NBT ALP显色试剂盒。
实验步骤
第一阶段:细胞培养与接种
1. 培养容器包被(可选,但强烈推荐): 由于诱导周期长(2-4周),细胞容易卷边脱落。建议用0.1%明胶覆盖培养器皿底面,在培养箱中孵育30分钟后吸去,自然晾干备用。
2. 细胞接种:取对数生长期、状态良好的MC3T3-E1 Subclone 14细胞,胰酶消化后计数。
3. 接种密度:推荐按照2-3 × 10⁴ cells/cm²的密度接种(例如12孔板或24孔板)。高密度接种有利于细胞更快达到融合,进入分化阶段。
4. 细胞培养:使用MC3T3-E1 Subclone 14生长培养基,置于37°C、5% CO₂培养箱中培养。
第二阶段:成骨诱导分化
建议设置:对照组(普通生长培养基)和实验组(成骨诱导培养基)。
1. 观察细胞融合度。当细胞达到80%-100%融合时,即可开始诱导。

诱导前汇合度参考
2. 吸去MC3T3-E1 Subclone 14生长培养基。
3. 实验组:加入预热好的成骨诱导分化完全培养基(OriCell®小鼠MC3T3-E1细胞成骨诱导分化试剂盒)。
4. 对照组:加入细胞生长培养基(OriCell®MC3T3-E1 Subclone 14 细胞系完全培养基)。
5. 每48-72小时更换一次新鲜培养基。换液时需轻柔操作,沿壁缓慢加入,避免吹起细胞单层。
第三阶段:染色鉴定
根据分化进程在不同时间点进行检测。
1. 碱性磷酸酶(ALP)检测(早期标志,通常在第7-14天)
ALP染色(定性):
① 吸去培养基,PBS清洗,4%多聚甲醛固定30分钟。
② PBS清洗后,加入BCIP/NBT染色工作液,室温避光孵育30分钟。阳性细胞呈蓝紫色。
2. 矿化结节检测(晚期标志,通常在14-21天)
茜素红染色(定性):
① 固定:同ALP染色步骤。
② 染色:加入1%茜素红染液,室温染色10-15分钟。
③ 清洗:用PBS或蒸馏水反复清洗去除浮色。
④ 观察:显微镜下观察,橘红色或深红色结节即为矿化结节。

成骨诱导后期茜素红染色
预期结果
1. 形态变化:诱导约1周后,细胞形态由长梭形逐渐变为铺路石样。2周后,细胞层上可见不透光的白色小结节(矿化结节雏形)。
2. ALP染色:第7-14天,诱导组可见大量蓝紫色阳性细胞,对照组基本为阴性。
3. 茜素红染色:第14-21天,诱导组可见大小不一的橘红色矿化结节,对照组无红色着色。
诱导全周期○孔板染色效果
前三孔为诱导组,后一孔为阴性对照组;第一排为茜素红染色,第二排为ALP染色。





关键注意事项与常见问题排查
1. 细胞代数与状态:
务必使用低代次细胞。高代次细胞会丧失分化潜能。开始实验前确保细胞状态良好,无污染。
2. 铺板均匀性:
接种时细胞悬液务必混匀,否则会导致分化不均一,染色时出现斑驳状。
3. 如何防止细胞脱落:
明胶包被:长周期诱导强烈推荐。
换液技巧:换液时枪头沿孔壁缓慢加入,或留少许旧液作为缓冲,避免直接冲击细胞层。
4. 培养基与添加物:
使用OriCell®小鼠MC3T3-E1细胞成骨诱导分化试剂盒建议现配现用,以保证成骨诱导添加物的效期稳定性。
培养基使用前需提前预热。
5. (茜素红/ALP)染色问题排查:
① 染色背景脏/有沉淀:
茜素红染液使用前可离心去除沉淀;
染色后需彻底清洗。
② 染色很淡/无钙结节:
原因:诱导时间不足(常规需2-3周);细胞分化潜能丢失(代数过高);诱导试剂失效(过期,或者储存不当)。
对策:适当延长诱导时间;检查试剂有效期;设置阳性对照药物。
③ 染色不均: 源于铺板不均或诱导过程中细胞局部脱落。
03 赛业生物3T3细胞相关推荐
赛业生物可提供3T3细胞一站式解决方案:现货细胞系(经过STR、支原体检测)、细胞培养试剂(生长培养基、诱导分化培养基、冻存液、消化液等)、细胞基因修饰(基因敲除、点突变、基因敲入、过表达和干扰)、细胞常规功能及特性检测等技术服务。
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类型 |
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诱导分化 |
MUXMT-90021 |
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MUXMT-90031 |
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MUXTL-90031 |
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生长培养基 |
CMM5-0101 |
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CMM5-0201 |
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CMM7-0201 |
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CMM7-1001 |
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CMM5-0301 |
KO细胞模型推荐(部分列举)
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细胞名称 |
基因名称 |
NCBI编号 |
服务编号 |
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3T3-L1 |
Ctbp1 |
13016 |
SY-KO-00107 |
|
MC3T3 |
Piezo1 |
234839 |
SY-KO-00330 |
|
MC3T3-E1 |
Ccdc134 |
76457 |
SY-KO-00470 |
|
MC3T3-E1 |
Fam20b |
215015 |
SY-KO-00408 |
|
MC3T3-E1 |
Lgr5 |
14160 |
SY-KO-00342 |
|
NIH/3T3 |
Fbxl12 |
30843 |
SY-KO-00410 |
|
NIH/3T3 |
Rpgrip1l |
244585 |
SY-KO-00422 |
|
NIH/3T3 |
Smo |
319757 |
SY-KO-00290 |
|
NIH3T3 |
4933427D06Rik |
232217 |
SY-KO-00084 |
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