MSC 成软骨分化软骨球总散?能补救吗?
间充质干细胞(MSC)向软骨细胞分化是鉴定其分化潜能的主要指标之一,常规诱导程序是3D诱导成软骨球。
MSC成软骨分化的过程
MSC首先收回其突起,聚集成团,这个团中间的细胞经分裂分化转变成一种大而圆的细胞,即成软骨细胞;成软骨细胞产生基质和纤维(主要为II型胶原蛋白),当基质的量增加到一定程度时,成软骨细胞被分隔在陷窝内,分化为成熟的软骨细胞。
如果软骨球散了,有补救方法吗?
软骨球为什么会散呢?
快来对照自查你是否犯了这些操作大忌!!
- 成软骨诱导易犯的错误操作!
- 细胞接种量:未按照推荐量,细胞量太多太少都不利于成球。
- 换液/移液过猛:枪头直接冲击软骨球,破坏细胞间连接与基质。
- 培养容器不当:用普通贴壁板/管,细胞贴壁导致微团被撕裂。
- 成球阶段扰动:成球前24–48小时频繁移动/晃动,细胞无法形成稳定聚集体。
离心不足/过度:成球时离心力/时间不够(松散)或过大(细胞损伤、后期易散)。
那还有什么办法补救吗?
解决方案:
- 前期弹散的球,仅细胞聚集体、基质少,轻微散了可重新聚集成球。
- 中后期弹散的球,难以重新聚集,已无法补救,建议重新进行成软骨诱导流程。
成软骨诱导操作要点——从源头避免软骨球散掉
1.细胞准备:
用低代次、活力≥95%、处于对数生长期的MSC。
2.试剂准备:
赛业生物OriCell提供的成软骨诱导液为根据特定种属、特定组织的细胞诱导而定制的无血清培养体系,需要在15mL的锥形底离心管中进行诱导。

成软骨诱导试剂盒内含基础培养基+软骨分化添加物+阿利辛蓝染色液,共100mL/kit。
诱导成球操作(黄金标准):
- 每管/孔3–4×10⁵个细胞。
- 成软骨液重悬后,200×g离心4分钟,形成紧密细胞沉淀(务必不能吹打!!!)。
- 拧松离心管盖,直立静置培养24小时,绝对不移动离心管,待自发形成紧实微球后再轻弹悬浮。每次换液之前需要将细胞团弹起以便与诱导液充分接触。
- 细胞团直径增至1.5mm~2mm左右时终止诱导,进行后续的石蜡切片以及阿利新蓝染色鉴定。

换液规范:
每2-3天换液,吸液时枪头贴壁、沿着液面下缓慢操作,不触碰软骨球。
加液操作:
沿管壁缓慢加入预热至37℃的新鲜诱导液,动作轻柔。
培养基质控:
诱导液务必现配现用,避免反复冻融。
环境稳定:
37℃、5% CO₂、饱和湿度;避免培养箱门频繁开关导致温度/CO₂波动。
注意事项:
更换培养基后务必拧松离心管盖再放入培养箱中。
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